Diversidad y estructura genética de artibeus jamaicensis (chiroptera: phyllostomidae) en Chiapas, México
DOI:
https://doi.org/10.21829/azm.2017.3311013Palabras clave:
D-loop, diversidad genética, estructura, haplotipos, historia demográficaResumen
La deforestación de las selvas provoca la fragmentación de los hábitats, lo cual interviene en la composición, abundancia y demografía de las especies, y por lo tanto, en el aislamiento poblacional en muchas especies. Los impactos de la fragmentación dependerán de la capacidad de respuesta de las especies a los disturbios en su hábitat, y de la configuración y estructura del paisaje. En algunas poblaciones, la fragmentación del hábitat puede provocar el aislamiento poblacional a largo plazo, por la reducción del tamaño poblacional y el debilitamiento de relaciones entre individuos, aún en especies de alta movilidad como los murciélagos. En México, A. jamaicensis es de los murciélagos más estudiados; sin embargo, son pocos los trabajos enfocados en conocer los impactos de la modificación de su hábitat, en su diversidad y estructura genética. Por lo tanto, el objetivo de este trabajo fue evaluar la diversidad, la estructura y la diferenciación genética, así como analizar la historia demográfica de A. jamaicensis en dos hábitats diferentes, utilizando un fragmento de 396 pb de la región mitocondrial D-loop. La red de haplotipos reveló 34 haplotipos únicos de 34 individuos analizados. La diversidad haplotípica fue alta (h = 1) para ambas poblaciones, y la diversidad nucleotídica fue relativamente baja (< 0.03). El análisis de la distribución de diferencias nucleotídicas pareadas (distribución mismatch), y los valores negativos de los estadísticos basados en pruebas de neutralidad, sugieren un proceso de expansión demográfica reciente y repentina de A. jamaicensis. Una moderada diferenciación genética apunta a que existe estructura genética de A. jamaicensis.
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Altschul, S. F., Gish, W., Miller, W., Myers, E. W. & Lipman, D. J. 1990. Basic local alignment search tool. Journal of Molecular Biology, 215, 403-410. DOI: https://doi.org/10.1016/S0022-2836(05)80360-2
Ávila-Cabadilla, L. D., Stoner, K. E., Henry, M. & Alvarez-Añorve, M. Y. 2009. Composition, structure and diversity of phyllostomid bat assemblages in different successional stages of a tropical dry forest. Forest Ecology and Management, 258, 986-996. DOI: https://doi.org/10.1016/j.foreco.2008.12.011
Bandelt, H. J, Forster, P. & Röhl, A. 1999. Median-joining networks for inferring intraspecific phylogenies. Molecular Biology Evolution, 16, 37-48. DOI: https://doi.org/10.1093/oxfordjournals.molbev.a026036
Bicca-Marques, J. C. 2003. How do howler monkeys cope with hábitat fragmentation? pp. 283-30. In: L. K., Marsh (Ed.). Primates in fragments: Ecology and conservation. Kluwer Academic Plenum Publishers. New York. DOI: https://doi.org/10.1007/978-1-4757-3770-7_18
Carstens, B., Sullivan, J., Davalos, L. M., Larsen, P. A. & Pedersen, S. C. 2004. Exploring population genetic structure in three species of Lesser Antillean bats. Molecular Ecology, 13, 2557-2566. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1365-294X.2004.02250.x
Castro-Luna, A. A. 2007. Cambios en los ensamblajes de murciélagos en un paisaje modificado por actividades humanas en el trópico húmedo de México. Tesis de doctorado. Instituto de Ecología, A. C. Xalapa, Veracruz, 119 pp.
Clutton-Brock, T. H. 1988. Reproductive success. pp. 472-486. In: T. H. Clutton-Brock (Ed.). Reproductive Success. The University of Chicago Press, Chicago, Illinois.
Covaleda, S., Aguilar, S., Ranero, A., Marín, I. & Paz, F. 2014. Diagnóstico sobre determinantes de deforestación en Chiapas. Alianza México para la reducción de emisiones por deforestación y degradación. México, D. F., 150 pp.
Del Real-Monroy, M., Martínez-Méndez, N. & Ortega, J. 2014. MHC-DRB exon 2 diversity of the Jamaican fruit-eating bat (Artibeus jamaicensis) from Mexico. Acta Chiropterologica, 16, 301-314. DOI: https://doi.org/10.3161/150811014X687260
Eisenberg, J. F. & Redford, K. H. 1999. Mammals of the Neotropics. The central Neotropics: Ecuador, Perú, Bolivia, Brazil: The University of Chicago Press, Chicago, 593 pp.
Excoffier, L., Laval, G. & Schneider, S. 2006. Arlequin version 3.1: an integrated software package for population genetics data analysis. Evolutionary Bioinformatics, 1, 47-50. Available at: http://cmpg.unibe.ch/software/arlequin3/ DOI: https://doi.org/10.1177/117693430500100003
Fahrig, L. 2003. Effects of habitat fragmentation on biodiversity. Annual Review of Ecology, Evolution, and Systematics, 34, 487-515. DOI: https://doi.org/10.1146/annurev.ecolsys.34.011802.132419
FAO 2010. Organización de las Naciones Unidas para la Agricultura y la Alimentación. Evaluación de los recursos forestales mundiales 2010. Informe Nacional México. Roma, Italia.
Fenton, M., Acharya, L., Audet, D., Hickey, M., Merriam, C.,
Obrist, M., Syme, D. & Adkins, B. 1992. Phyllostomid bats
(Chiroptera: Phyllostomidae) as indicators of habitat disruption in the Neotropics. Biotropica, 24, 440-446. DOI: https://doi.org/10.2307/2388615
Fleming, T. H., Murray, K. L. & Carstens, B. 2009. Phylogeography and genetic structure of three evolutionary lineages of West Indian Phyllostomidae bats. pp. 116-150. In: T. H. Fleming & P.A. Racey (Eds.). Island bats: evolution, ecology and conservation. The University of Chicago Press. Chicago.
Fluxus Technology Ltd. 2012. Network 4.6.1.3. Available at: http://www.fluxus-engineering.com/sharenet.htm#ug
Forster, P. 2004. Ice Ages and the mitochondrial DNA chronology of human dispersals: a review. Philosophical Transactions of the Royal Society of London. Series B: Biological Sciences, 259, 255-264. DOI: https://doi.org/10.1098/rstb.2003.1394
Fu, Y. X. & Li, W. H. 1993. Statistical tests of neutrality of mutations. Genetics, 133, 693-709. DOI: https://doi.org/10.1093/genetics/133.3.693
Fu, Y. X. 1997. Statistical tests of neutrality of mutations against population growth, hitchhiking and backgroud selection. Genetics, 147, 915-925. DOI: https://doi.org/10.1093/genetics/147.2.915
Galindo-González, J. 2004. Clasificación de los murciélagos de la región de los Tuxtlas, Veracruz, respecto a su respuesta a la fragmentación del hábitat. Acta Zoológica Mexicana, 20, 239-243. DOI: https://doi.org/10.21829/azm.2004.2022344
Galindo-González, J. 2007. Efectos de la fragmentación del paisaje sobre las poblaciones de mamíferos, el caso de los murciélagos de Los Tuxtlas Veracruz. Pp. 97-114. In: G. Sánchez-Rojas & A. E. Rojas-Martínez (Eds.). Tópicos en Sistemática, Biogeografía, Ecología y Conservación de Mamíferos. Universidad Autónoma del Estado de Hidalgo, México.
Gómez-Nísino, A. 2006. Ficha técnica de Lonchorhina aurita. In: R. Medellín (Ed.). Los mamíferos mexicanos en riesgo de extinción según el PROY-NOM-059-ECOL-2000. Instituto de Ecología, Universidad Nacional Autónoma de México, D. F.
Grant, W. S. & Bowen, B. W. 1998. Shallow population histories in deep evolutionary lineages of marine fishes: insights from sardines and anchovies and lesson for conservation. The Journal of Heredity, 89, 415-426. DOI: https://doi.org/10.1093/jhered/89.5.415
Hamilton, M. B. 2009. Populations genetics. Wiley-Blackwell, Oxford, 424 pp.
Hewitt, G. M. 2000. The genetic legacy of the Ice Ages. Nature, 405, 907-913. DOI: https://doi.org/10.1038/35016000
Hillis, D. M., Moritz, C. & Mable, B. K. 1996. Applications of molecular systematics: the state of the field and a look to the future. pp. 515-543. In: D. M. Hillis, C. Moritz & B. K. Mable (Eds.). Molecular Systematics, Sinauer Associates, Sunderland, Massachusetts. DOI: https://doi.org/10.2307/1447682
Holderegger, R. & Di Giulio, M. 2010. The genetic effects of roads: a review of empirical evidence. Basic and Applied Ecology, 11, 522-531. DOI: https://doi.org/10.1016/j.baae.2010.06.006
Hudson, R. R., Boos, D. D. & Kaplan, N. L. 1992. A statistical test for detecting population subdivision. Molecular Biology Evolution, 9, 138-151.
Jones, K. E., Barlow, K. E., Vaughan, N., Rodríguez-Durán, A. & Gannon, M. R. 2001. Short-term impacts of extreme environmental disturbance on the bats of Puerto Rico. Animal Conservation, 4, 59-66. DOI: https://doi.org/10.1017/S1367943001001068
Juste, J., Bilgin, R., Muñoz, J. & Ibáñez, C. 2009. Mitochondrial DNA signatures at different spatial scales: from the effects of the Straits of Gibraltar to population structure in the meridional serotine bat (Eptesicus isabellinus). Heredity, 103, 178-187. DOI: https://doi.org/10.1038/hdy.2009.47
Kaplan, N. L., Darden, T. & Hudson, R. 1989. The coalescent process in models with selection. Genetics, 120, 819-829.
Kimura, M. 1991. The neutral theory of molecular evolution: A review of recent evidence. Japanese Journal of Genetics, 66, 367-386. DOI: https://doi.org/10.1266/jjg.66.367
Kunz, T. H., & Díaz, C. A. 1995. Folivory in fruit-eating bats with new evidence from Artibeus jamaicensis (Chiroptera: Phyllostomidae). Biotropica, 27, 106-120. DOI: https://doi.org/10.2307/2388908
Kunz, T. H., Arnett, E. B., Erickson, W. P., Hoar, A. R., Johnson, G. D., Larkin, R. P., Strickland, M. D., Threshe, R. W. & Tuttle, M. D. 2007. Ecological impacts of wind energy development on bats: questions, research needs, and hypotheses. Frontiers in Ecology and the Environment, 5, 315-324. DOI: https://doi.org/10.1890/1540-9295(2007)5[315:EIOWED]2.0.CO;2
Landaverde-González, P., Calderón, A. P., Solórzano, E. & Ariza, M. A. 2012. Efecto de la fragmentación sobre el flujo génico de Artibeus jamaicensis en el Biotopo el Zotz y su zona de amortiguamiento en Petén, Guatemala. Universidad de San Carlos de Guatemala. Informe técnico.
Larkin, M. A., Blackshields, G., Brown, N. P., Chenna, R., Mcgettigan, P. A., Mcwilliam, H., Valentin, F., Wallace, I. M., Wilm, A., Lopez, R., Thompson, J. D., Gibson, T. J. & Higgins, D. G. 2007. Clustal X Version 2.0. Bioinformatics, 23, 2947-2948. DOI: https://doi.org/10.1093/bioinformatics/btm404
Larsen, P. A., Hoofer, S. R., Bozeman, M. C., Pedersen, S. C., Genoways, H. H., Phillips, C. J., Pumo, D. E. & Baker, R. J. 2007. Phylogenetics and phylogeography of the Artibeus jamaicensis complex based on cytochrome-b DNA sequences. Journal of Mammalogy, 88, 712-727. DOI: https://doi.org/10.1644/06-MAMM-A-125R.1
Librado, P. & Rosas. J. 2009. DnaSP version 5: a software for comprehensive analysis of DNA polymorphism data. Bioinformatics, 25, 1451-1452. DOI: https://doi.org/10.1093/bioinformatics/btp187
Lim, B. K., Engstrom, M. D., Lee, T. E., Patton, J. C. & Bickham, J. W. 2004. Molecular differentiation of large species of fruit-eating bats (Artibeus) and phylogenetic relationships based on the cytochrome b gene. Acta Chiropterologica, 6, 1-12. DOI: https://doi.org/10.3161/001.006.0101
Lunt, D. H., Whippl, L. E. &. Hyman, B. C. 1998. Mitochondrial DNA variable number tandem repeats (VNTRs): utility and problems in molecular ecology. Molecular Ecology, 7, 1441-1455. DOI: https://doi.org/10.1046/j.1365-294x.1998.00495.x
Medellín, R. A., Arita, H. & Sánchez, O. 2008. Identificación de los murciélagos de México, clave de campo. Instituto de Ecología, UNAM, México, D. F., 79 pp.
Melo, F. P. L., Rodríguez-Herrera, B., Chazdon, R. L., Medellín, R. A. & Ceballos, G. G. 2009. Small tent-roosting bats promote dispersal of large-seeded plants in a Neotropical forest. Biotropica, 41, 737-743. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1744-7429.2009.00528.x
Meyer, C. F. J., Kalko, E. K.V. & Kerth, G. 2009. Small-scale fragmentation effects on local genetic diversity in two phyllostomid bats with different dispersal abilities in Panama. Biotropica, 41, 95-102. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1744-7429.2008.00443.x
Miller-Butterworth, C. M., Jacobs, D. S. & Harley, E. H. 2003. Strong population substructure is correlated with morphology and ecology in a migratory bat. Nature, 424, 187-191. DOI: https://doi.org/10.1038/nature01742
Mittermeier, R. A., Robles, P. & Goettsch, C. 1997. Megadiversidad. Los países biológicamente más ricos del mundo. México, D. F., 76 pp.
Morrison, D. W. 1978. Foraging ecology and energetics of the frugivorous bat Artibeus jamaicensis. Ecology, 59, 716-723. DOI: https://doi.org/10.2307/1938775
Nei, M. 1987. Molecular Evolutionary Genetics. Columbia University Press, New York, 512 pp. DOI: https://doi.org/10.7312/nei-92038
Ortega, J. & Arita, H. T. 1999. Structural and social dynamics of harem groups in Artibeus jamaicensis (Chiroptera: Phyllostomidae). Journal of Mammalogy, 80, 1173-1185. DOI: https://doi.org/10.2307/1383168
Ortega, J. & Arita, H. T. 2004. Estructura social y movimientos de los murciélagos zapoteros (Artibeus jamaicensis) en un ambiente poligínico. pp. 363-374. In: V. Sánchez-Cordero & R. A. Medellín (Eds.). Contribuciones mastozoológicas en homenaje a Bernardo Villa. Instituto de Biología, UNAM, México, D. F.
Ortega, J. & Castro-Arellano, I. 2001. Artibeus jamaicensis. Mammalian Species, 662, 1-9. DOI: https://doi.org/10.1644/1545-1410(2001)662<0001:AJ>2.0.CO;2
Ortega, J., Guerrero, J. A. & Maldonado, J. E. 2008. Aggression and tolerance by dominant males of Artibeus jamaicensis: strategies to maximize fitness in harem groups. Journal of Mammalogy, 89, 1372-1378. DOI: https://doi.org/10.1644/08-MAMM-S-056.1
Ortega, J., Maldonado, E., Arita, H., Wilkinson, G. & Fleischer, R. 2002. Characterization of microsatellite loci in the Jamaican fruiteating bat Artibeus jamaicensis and cross species amplification. Molecular Ecology Notes, 2, 462-464. DOI: https://doi.org/10.1046/j.1471-8286.2002.00278.x
Ortega, J., Maldonado, J. E., Wilkinson, G. S., Arita, H. T. &
Fleischer, R. C. 2003. Male dominance, paternity and relatedness in the Jamaican fruit-eating bat (Artibeus jamaicensis). Molecular Ecology, 12, 2409-2415. DOI: https://doi.org/10.1046/j.1365-294X.2003.01924.x
Perfectti, F., Picó, F. X. & Gómez, J. M. 2009. La huella genética de la selección natural. Ecosistemas, 18, 10-16.
Peters, S. L., Malcolm, J. R. & Zimmerman, B. L. 2006. Effects of selective logging on bat communities in Southeastern Amazon. Conservation Biology, 20, 1410-1421. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1523-1739.2006.00526.x
Phillips, C. J., Pumo, D. E., Genoways, H. H., Ray, P. E. & Briskey, C. A. 1991. Mitocondrial DNA evolution and phylogeography in two Neotropical Fruit Bats Artibeus jamaicensis and Artibeus lituratus. pp. 97-123. In: M. A.
Mares & D. J. Schmidly (Eds.). Latin American mammalogy, history, biodiversity and conservation.
University of Oklahoma Press.
Pumo, D. E., Kim, I., Remsen, J., Phillips, C. & Genoways, H. H. 1996. Molecular systematics of the fruit bat, Artibeus jamaicensis: origin of an unusual island population. Journal of Mammalogy, 77, 491-503. DOI: https://doi.org/10.2307/1382824
Ramos-Onsins, S. E. & Rozas, J. 2002. Statistical properties of new neutrality tests against population growth. Molecular Biology and Evolution, 19, 2092-2100. DOI: https://doi.org/10.1093/oxfordjournals.molbev.a004034
Reid, F.A. 2009. A Field Guide to the Mammals of Central America & Southeast Mexico. Oxford University Press, New York, 384 pp.
Ripperger, S. P., Tschapkab, M., Kalko, E. K., Rodríguez-Herrera, B. & Mayer, F. 2013. Life in a mosaic landscape: anthropogenic habitat fragmentation affects genetic population structure in a frugivorous bat species. Conservations Genetics, 14, 925-934. DOI: https://doi.org/10.1007/s10592-012-0434-y
Ripperger, S. P., Tschapkab, M., Kalko, E. K., Rodríguez-Herrera, B. & Mayer, F. 2014. Resisting habitat fragmentation: high genetic connectivity among populations of the frugivorous bat Carollia castanea in an agricultural landscape. Ecosystems and Environment, 185, 9-15. DOI: https://doi.org/10.1016/j.agee.2013.12.006
Rogers, A. R. & Harpending, H. 1992. Population growth makes waves in the distribution of pairwise genetic differences. Molecular Biology and Evolution, 9, 552-569.
Rossiter, S. J., Jones, G., Ransome, R. & Barratt, E. M. 2000. Genetic variation and population structure in the endangered greater horseshoe bat Rhinolophus ferrumequinum. Molecular Ecology, 9, 1131-1135. DOI: https://doi.org/10.1046/j.1365-294x.2000.00982.x
Rossiter, S. J., Zubaid, A., Mohd-Adnan, A., Struebig, M. J.,
Kunz, T. H., Gopal, S., Petit, E. J. & Kingston, T. 2012. Social organization and genetic structure: insights from codistributed bat populations. Molecular Ecology, 21, 647-661. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1365-294X.2011.05391.x
Ruíz, E., Vargas-Miranda, B. & Zúñiga, G. 2013. Late-Pleistocene phylogeography and demographic history of two evolutionary lineages of Artibeus jamaicensis (Chiroptera: Phyllostomidae) in Mexico. Acta Chiropterologica, 15, 19-33. DOI: https://doi.org/10.3161/150811013X667830
Sambrook, J., Fritsh, E. F. & Maniatis, T. 1989. Molecular Cloning: A Laboratory Manual. Cold Spring Harbor Laboratory Press, New York, 1626 pp.
Sánchez, R. 2009. Cambios en la estructura de la comunidad de murciélagos de la Estación Biológica La Selva, Costa Rica: 1973 y 2005. Tesis de Maestría. Facultad de Ciencias, UNAM. México.
Saunders, D. A. Hobbs, R. J. & Margules, C. R. 1991. Biological consequences of ecosystem fragmentation: a review. Conservation Biology, 5, 18-32. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1523-1739.1991.tb00384.x
Schulze, M. D., Seavy, N. E. & Whitacre, D. F. 2000. A comparison of phyllostomid bat assemblages in undisturbed Neotropical forest and in forest fragments of a slash and burn farming mosaic in Petén, Guatemala. Biotropica, 32, 174-184. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1744-7429.2000.tb00459.x
Shiang-Fan, C., Rossiter, S. J., Faulkes, C. G. & Jones, G. 2006. Population genetics structure and demographic history of the endemic Formosan lesser horseshoe bat (Rhinolophus monoceros). Molecular Ecology, 15, 1643-1656. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1365-294X.2006.02879.x
Slatkin, M. & Hudson, R. R. 1991. Pairwise comparisons of mitocondrial DNA sequences in stable and exponentially growing populations. Genetics, 129, 555-562. DOI: https://doi.org/10.1093/genetics/129.2.555
Soriano, P. J. & Ochoa, J. G. 2001. The consequences of timber exploitation for bat communities in tropical America. pp. 153-166. In: R. A. Fimbel, A. Grajal, J. G. Robinson (Eds.). The Cutting Edge: Conserving Wildlife in Logged Tropical Forests. Columbia University Press, New York, N.Y. DOI: https://doi.org/10.7312/fimb11454-011
Studier, E. H., Boyd, B. C., Felman, A. T., Dapson, R. & Wilson, D. E. 1983. Renal function in the Neotropical bat, Artibeus jamaicensis. Comparative Biochemistry and Physiology part a Physiology, 74, 199-209. DOI: https://doi.org/10.1016/0300-9629(83)90589-3
Tajima, F. 1989. Statistical method for testing the neutral mutation hypothesis by DNA polymorphism. Genetics, 123, 585-595. DOI: https://doi.org/10.1093/genetics/123.3.585
Technelysium Pty Ltd. 2003-2009. ChromasPro version 1.5. Available at: http://softadvice.informer.com/ Chromaspro_Download. HTML
Vargas-Miranda, B. 2009. Filogeografía de Artibeus jamaicensis triomylus y Artibeus jamaicensis yucatanicus (Chiroptera: Phyllostomidae) de México. Tesis de doctorado. Escuela Nacional de Ciencias Biológicas, Instituto Politécnico Nacional. México, D. F. 92 pp.
Vázquez-Domínguez, E., Mendoza-Martínez, A., Orozco-Lugo, L. & Cuarón, A. D. 2013. High dispersal and generalist habits of the bat Artibeus jamaicensis on Cozumel Island, Mexico: an assessment using molecular genetics. Acta Chiropterologica, 15,411-421. DOI: https://doi.org/10.3161/150811013X679035
Wilcove, D. S., McLellan, C. H. & Dobson, A. P. 1986. Habitat fragmentation in the temperate zone. pp. 237-56. In: M. E. Soulé (Ed.). Conservation Biology. Sunderland, Sinauer.
Wilcox, B. A. & Murphy, D. D. 1985. Conservation strategy: the effects of fragmentation on extinction. The American Naturalist, 125, 879-887. DOI: https://doi.org/10.1086/284386
Wilkinson, G. S. & Chapman, A. M. 1991. Length and sequence variation in evening bat D-loop mtDNA. Genetics, 128, 607-617. DOI: https://doi.org/10.1093/genetics/128.3.607
Wilkinson, G. S., Mayer, F., Kerth, G. & Petri, B. 1997. Evolution of repeated sequence arrays in the D-loop region of bat mitocondrial DNA. Genetics, 146, 1035-1048. DOI: https://doi.org/10.1093/genetics/146.3.1035
Wright, S. 1951. The genetical structure of populations. Annals of Eugenics, 15, 323-354. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1469-1809.1949.tb02451.x
Yun-Dong, G., Yu, Z., Xin-Fen, Z. & Zhang-Ming, Z. 2015. Pleistocene glaciations, demographic expansion and subsequent isolation promoted morphological heterogeneity: A phylogeographic study of the alpine Rosa sericea complex (Rosaceae). Scientific Reports, 5, 11-98. DOI: https://doi.org/10.1038/srep11698
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