Evaluación de la calidad espermática epididimal en hipopótamos Hippopotamus amphibius (Artiodactyla: Hippopotamidae) ubicados en el Magdalena Medio, Colombia
DOI:
https://doi.org/10.21829/azm.2016.322943Palabras clave:
Colombia, cinética espermátic, histologíaResumen
El hipopótamo común (Hippopotamus amphibius) es un mamífero del orden Artiodactyla, que habita en África, con una población decreciente a nivel global. Con fines de conservación genética, se han realizado procesos de biotecnología reproductiva, entre los que se reporta, la recuperación de espermatozoides por métodos como la electroeyaculación y la extracción desde epidídimos. Este mamífero es considerado una especie invasora exótica y fue introducido en Colombia en 1985; actualmente se reproduce de forma descontrolada en la región del Magdalena Medio. Como medida de control poblacional, se ha realizado la esterilización quirúrgica de algunos ejemplares. El objetivo de este estudio fue evaluar diferentes parámetros espermáticos e histológicos, relacionados con la calidad seminal epididimal de hipopótamos comunes ubicados en el Magdalena Medio, Colombia. Dos hipopótamos fueron orquiectomizados quirúrgicamente y los espermatozoides fueron recuperados por los métodos combinados de lavado retrógrado e inyección de medio. Se realizó la evaluación de la movilidad (sistema SCA®), la vitalidad espermática y la morfología espermática (prueba supravital), el potencial de membrana mitocondrial (JC-1), la integridad acrosómica (FITC-PNA), y la integridad estructural (SYBR14/IP) y funcional (prueba HOS) de la membrana plasmática. Asimismo, se realizó un análisis histológico de testículos y epidídimos. A excepción de la movilidad progresiva, la integridad funcional de membrana y la morfología espermática, se hallaron resultados muy similares para los parámetros de calidad seminal de ambos individuos. Las anormalidades espermáticas predominantes fueron gota citoplasmática y cola enrollada. El análisis histológico evidenció un proceso activo de espermatogénesis. Se concluye que la extracción epididimal de espermatozoides, posterior a la orquiectomía de hipopótamos comunes ubicados en un hábitat no nativo, permite obtener muestras espermáticas de buena calidad.
Descargas
Citas
Álvarez, G., Rojano, C., Carrascal, J., Chacón, J. & Martínez, C. 2014. Histopatología de órganos y lesiones en hicoteas Trachemys callirostris callirostris (Gray, 1856) mantenidas en cautiverio en Córdoba, Colombia. Revista CES Medicina Veterinaria y Zootecnia, 9: 15-25.
Anel-López, L., Martínez-Rodríguez, C., Soler, A., Fernández-Santos, M., Gardea, J. & Morrell, J. 2015. Use of Androcoll-S after thawing improves the quality of electroejaculated and epididymal sperm samples from red deer. Animal Reproduction Science, 158: 68-74. DOI: https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2015.04.009
Avilés, K. 2011. Estudio de la funcionalidad espermática, interacción de gametos y análisis proteico en espermatozoides epididimarios y eyaculados en la especie porcina. Tesis doctoral, Facultad de Veterinaria, Universidad de Murcia, Región de Murcia, 239 pp.
Barth, A. & Oko, R. 1989. Anormal morfology of bovine spermatozoa. Iowa State University Press, 1ra ed. Iowa, USA, 285 pp.
Belda, E., Laredo, F. G., Escobar, M., Agut, A., Soler, M. & Lucas, X. 2005. Agonistas ?-2 adrenérgicos en sedación y anestesia veterinaria. Anales de Veterinaria, 21: 23-33.
Blowers, T., Waterman, J., Kuhar, C. & Bettinger, T. 2010. Social behaviors within a group of captive female Hippopotamus amphibius. Journal of Ethology, 28: 287-294. DOI: https://doi.org/10.1007/s10164-009-0184-6
Cary, J., Madill, S., Farnsworth, K., Hayna, J., Duoos, L. & Fahning, M. 2004. A comparison of electroejaculation and epididymal sperm collection techniques in stallions. Canadian Veterinary Journal, 45: 35-41.
Cerling, T., Harris, J., Hart, J., Kaleme, P., Klingel, H., Leakey, M., Levin, N., Lewison, R. & Passey, B. 2008. Stable isotope ecology of the common hippopotamus. Journal of Zoology, 276: 204-212. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1469-7998.2008.00450.x
Eltringham, S. 1993. The Pygmy Hippopotamus (Hexaprotodon liberiensis). Pp 55-60. In: W. Oliver (Ed.). Pigs, peccaries, and hippos. International Union for the Conservation of Nature, Gland, Switzerland.
Elzanaty, S., Richthoff, J., Malm, J. & Giwercman, A. 2002. The impact of epididymal and accessory sex gland function on sperm motility. Human Reproduction, 17: 2904-2911. DOI: https://doi.org/10.1093/humrep/17.11.2904
Erken, A., Klaver, P. & Frankenhuis, M. 1994. Castration and sterilization of an adult male hippopotamus. Erkrankungen der Zootiere. 36: 333-335.
Estes, R. 1992. The behavior guide to African mammals: including hoofed mammals, carnivores, primates, 20th Anniversary Edition. University of California Press, 1ra ed. Los Angeles, California.
Fisher, R., Scott, K. & Adrian, B. 2010. Hind limb myology of the common hippopotamus, Hippopotamus amphibius (Artiodactyla: Hippopotamidae). Zoological Journal of the Linnean Society, 158: 661-682. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1096-3642.2009.00558.x
Gamboa, S., Rodrigues, A., Henriques, I., Batista, C. & Ramalho-Santos, J. 2010. Seasonal functional relevance of sperm characteristics in equine spermatozoa. Theriogenology, 73: 950-958. DOI: https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2009.11.023
Goovaerts, I., Hoflack, G., Van Soom, A., Dewulf, J., Nichi, M., de Kruif, A. & Bols, P. 2006. Evaluation of epididymal semen quality using the Hamilton-Thorne analyzer indicates variation between the two caudae epididymides of the same bull. Theriogenology, 66: 323-330. DOI: https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2005.11.018
Graham, L., Reid, K., Webster, T., Richards, M. & Joseph, S.
Endocrine patterns associated with reproduction in the Nile hippopotamus (Hippopotamus amphibius) as assessed by fecal progestagen analysis. General and Comparative Endocrinology, 128: 74-81. DOI: https://doi.org/10.1016/S0016-6480(02)00066-7
Gravance, C., Garner, D., Baumber, J. & Ball, B. 2000. Assessment of equine sperm mitochondrial function using JC-1. Theriogenology, 53: 1691-1703. DOI: https://doi.org/10.1016/S0093-691X(00)00308-3
Hidalgo, M., Rodriguez I, Dorado J, Sanz J, & Soler C. 2005.
Effect of sample size and staining methods on stallion sperm morphometry by the Sperm Class Analyzer. Vet Med – Czech 2005; 50: 24-32. DOI: https://doi.org/10.17221/5593-VETMED
Kayanja, F. 1989. The reproductive biology of the male hippopotamus. Pp. 181-196. In: F. Kayanja, P. Jeweel & G. Maloiy (Eds.).Symposia of the Zoological Society of London, Oxford University Press, London, UK.
Krishnakumar, S., Whiteside, D., Elkin, B. & Thundathil, J. 2011. Evaluation of an animal protein-free semen extender for cryopreservation of epididymal sperm from North American bison (Bison bison). Theriogenology, 76: 252-260. DOI: https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2011.02.001
Laredo, F., Gómez-Villamandos, R., Redondo, J. I., Cruz, J. I. & Burzaco, O. 2001. Anestesia inhalatoria: bases, drogas y equipamiento. Consulta de Difusión Veterinaria, 9: 69-83.
Lewison, R. & Oliver, W. (IUCN SSC Hippo Specialist Subgroup). 2008. Hippopotamus amphibius. The IUCN Red List of Threatened Species 2008: e.T10103A3163790.doi: 10.2305/IUCN.UK.2008.RLTS.T10103A3163790
López-Saucedo, J., Paramio, M., Fierro, R., Izquierdo, D., Catalá, M., Coloma, M., Toledano-Díaz, A., López-Sebastián, A. & Santiago-Moreno, J. 2014. Sperm characteristics and heterologous in vitro fertilisation capacity of Iberian ibex (Capra pyrenaica) epididymal sperm, frozen in the presence of the enzymatic antioxidant catalase. Cryobiology, 68: 389-394. DOI: https://doi.org/10.1016/j.cryobiol.2014.03.009
Menon, A., Barkema, H., Wilde, R., Kastelic, J. & Thundathil, J. 2011. Associations between sperm abnormalities, breed, age, and scrotal circumference in beef bulls. Canadian Journal of Veterinary Research, 75: 241-247.
Monsalve, S. 2014. Los hipopótamos (Hippopotamus amphibius) en Colombia. Especie exótica, introducida e invasora. Revista Lasallista Investigación, 11: 229-230.
Mota, A., Rodrigues, H., Pereira, T., de Sousa, M., de Freitas, L. de Araújo A. & da Silva, L. 2014. Cryopreservation of canine epididymal sperm using ACP-106c and TRIS. Cryobiology, 69:17-21. DOI: https://doi.org/10.1016/j.cryobiol.2014.04.013
Moura, A., Souza, C. & Erickson B. 2011. Early prepubertal testis criteria, seminiferous epithelium and hormone concentrations as related to testicular development in beef bulls. Animal Reproduction Science, 124: 39-47. DOI: https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2011.01.016
Neild, D., Chaves, G., Flores, M., Mora, N., Beconi, M. & Agüero, A. 1999. Hypoosmotic test in equine spermatozoa. Theriogenology, 51: 721-727. DOI: https://doi.org/10.1016/S0093-691X(99)00021-7
Noirard, C., Le Berre, M., Ramousse, R. & Lena, J. 2008. Seasonal variation of thermoregulatory behavior in the Hippopotamus (Hippopotamus amphibius). Journal of Ethology, 26: 191-193. DOI: https://doi.org/10.1007/s10164-007-0052-1
Nowak, R. 1991. Walker’s Mammals of the World. The Johns Hopkins University Press, 5th ed. Baltimore, Maryland, EUA, 1629 pp.
Olaciregui, M., Gil, L., Montón, A., Luño, V., Jerez, R. & Martí, J. 2014. Cryopreservation of epididymal stallion sperm. Cryobiology, 68: 91-95. DOI: https://doi.org/10.1016/j.cryobiol.2013.12.009
Papa, P., Papa, F., Oliveira, L., Guasti, P., Castilho, C. & Giometti, I. 2015. Different extenders in the cryopreservation of bovine epididymal spermatozoa. Animal Reproduction Science, In Press. DOI: https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2015.08.004
Ramsay, E., Loomis, M., Mehren, K., Boardman, W., Jensen, J. & Geiser, D. 1998. Chemical restraint of the Nile hippopotamus (Hippopotamus amphibius) in captivity. Journal of Zoo and Wildlife Medicine, 29: 45-49.
Ramu, S. & Jeyendran, R. 2013. The hypo-osmotic swelling test for evaluation of sperm membrane integrity. Methods in Molecular Biology, 927: 21-25. DOI: https://doi.org/10.1007/978-1-62703-038-0_3
Rathi, R., Colembrander, B., Bevers, M. & Gadella, B. 2001. Evaluation of in vitro capacitation of stallion spermatozoa. Biology of Reproduction, 65: 462-470. DOI: https://doi.org/10.1095/biolreprod65.2.462
Ribeiro-Peres, A., Munita-Barbosa, L., Yumi-Kanazawa, M., Mello-Martins, M. & Ferreira de Souza, F. 2014. Criopreservación de espermatozoides bovinos extraídos de la cola del epidídimo utilizando los métodos convencional y automatizado. Archivos de Medicina Veterinaria, 46: 31-38. DOI: https://doi.org/10.4067/S0301-732X2014000100005
Saragusty, J., Hildebrandt, T., Bouts, T., Göritz, F. & Hermes, R. 2010a. Collection and preservation of pygmy hippopotamus (Choeropsis liberiensis) semen. Theriogenology, 74: 652-657. DOI: https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2010.03.002
Saragusty, J., Walzer, C., Petit, T., Stalder, G., Horowitz, I. & Hermes, R. 2010b. Cooling and freezing of epididymal sperm in the common hippopotamus (Hippopotamus amphibius). Theriogenology, 74: 1256-1263. DOI: https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2010.05.031
Skinner, J., Scorer, J. & Millar, R. 1975. Observations on the reproductive physiological status of mature herd bulls, bachelor bulls and young bulls in the hippopotamus Hippopotamus amphibius amphibius Linnaeus. General and Comparative Endocrinology, 26: 92-95. DOI: https://doi.org/10.1016/0016-6480(75)90218-X
Smuts, G., & Whyte, I. 1981. Relationships between reproduction and environment in the hippopotamus Hippopotamus amphibius in the Kruger National Park. Koedoe, 24: 169-185. DOI: https://doi.org/10.4102/koedoe.v24i1.626
Turri, F., Madeddu, M., Gliozzi, T., Gandini, G. & Pizzi, F. 2012. Influence of recovery methods and extenders on bull epididymal spermatozoa quality. Reproduction in Domestic Animals, 47: 712-717. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1439-0531.2011.01948.x
Ursing, B. & Arnason, U. 1998. Analyses of mitochondrial genomes strongly support a hippopotamus-whale clade. Proceedings of the Royal Society of London B Biological Sciences, 265: 2251-2255. DOI: https://doi.org/10.1098/rspb.1998.0567
Verstegen, J., Iguer-Ouada, M. & Onclin, K. 2002. Computer assisted semen analyzers in andrology research and veterinary practice. Theriogenology, 57: 149-179. DOI: https://doi.org/10.1016/S0093-691X(01)00664-1
Walzer, C., Petit, T., Stalder, G., Horowitz, I., Saragusty, J. & Hermes, R. 2014. Surgical castration of the male common hippopotamus (Hippopotamus amphibius). Theriogenology, 81: 514-518. DOI: https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2013.10.018
Yoshitomi, S., Kawashima, T., Murakami, K., Takayanagi, M.,
Inoue, Y., Aoyagi, R. & Sato, F. 2012. Anatomical architecture of the brachial plexus in the common hippopotamus (Hippopotamus amphibius) with special reference to the derivation and course of its unique branches. Anatomia Histologia Embryologia, 41:280-285. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1439-0264.2012.01135.x
Zapico, T. 1999. First documentation of flehmen in a common hippopotamus (Hippopotamus amphibius). Zoo Biology, 18: 415-420. DOI: https://doi.org/10.1002/(SICI)1098-2361(1999)18:5<415::AID-ZOO6>3.0.CO;2-Z
Descargas
Publicado
Cómo citar
-
Resumen1108
-
PDF301
Número
Sección
Licencia
Derechos de autor 2016 ACTA ZOOLÓGICA MEXICANA (N.S.)
Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución-NoComercial-CompartirIgual 4.0.
Acta Zoológica Mexicana (nueva serie) por Instituto de Ecología, A.C. se distribuye bajo una
Licencia Creative Commons Atribución-NoComercial-CompartirIgual 4.0 Internacional
