Perfiles de enzimas asociadas a la resistencia a pesticidas en Melanaphis sacchari (Zehntner) en el sur de Guanajuato

Autores/as

  • Enrique García-Burgos Estudiante de Doctorado en Parasitología Agrícola, Universidad Autónoma Agraria Antonio Narro. Calzada Antonio Narro 1923, Buenavista, C. P. 25315, Saltillo, Coahuila, México. https://orcid.org/0000-0001-9738-8352
  • Jerónimo Landeros-Flores Departamento de Parasitología, Universidad Autónoma Agraria Antonio Narro. Calzada Antonio Narro 1923, Buenavista, C. P. 25315, Saltillo, Coahuila, México.
  • Ernesto Cerna-Chavez Departamento de Parasitología, Universidad Autónoma Agraria Antonio Narro. Calzada Antonio Narro 1923, Buenavista, C. P. 25315, Saltillo, Coahuila, México.
  • Luis Aguirre-Uribe Departamento de Parasitología, Universidad Autónoma Agraria Antonio Narro. Calzada Antonio Narro 1923, Buenavista, C. P. 25315, Saltillo, Coahuila, México. https://orcid.org/0000-0001-8462-1012
  • Luis Patricio Guevara-Acevedo Instituto Tecnológico de Roque, Km 8 Carretera Celaya-Juventino Rosas, Celaya, C. P. 38110, Guanajuato, México.
  • Gilberto Rodríguez-Pérez Instituto Tecnológico del Valle del Yaqui, Calle 600, Block 611, Bácum, C. P. 85276, San Ignacio Río Muerto, Sonora, México. https://orcid.org/0000-0003-2297-8598

DOI:

https://doi.org/10.21829/azm.2022.3912441

Palabras clave:

plaga, insecticidas, pulgón amarillo

Resumen

El pulgón amarillo (Melanaphis sacchari), es una plaga que rápidamente se ha extendido por todo el territorio nacional, especialmente en los estados con alta producción de sorgo. De acuerdo con el Comité Estatal de Sanidad Vegetal de Guanajuato (CESAVEG), el estado reportó una alta incidencia de este insecto y, debido a su abundancia, ocasionó graves pérdidas en el cultivo de sorgo. En la actualidad, el método más utilizado para el control de esta plaga es la aplicación de productos químicos, lo que provoca resistencia a los insecticidas empleados. Una manera de determinar la presencia de un mecanismo metabólico de resistencia en M. sacchari presente en el área de estudio es determinando las absorbancias enzimáticas para obtener un perfil enzimático de la plaga. Por tal motivo, el objetivo de esta investigación fue determinar el perfil enzimático que presentan las principales enzimas en las ninfas colectadas en el área sur del estado de Guanajuato, correspondiente a los municipios de Acámbaro, Apaseo el Alto, Apaseo el Grande, Celaya, Cortázar, Jerécuaro, Juventino Rosas, Tarandacuao, Tarimoro, Villagrán, y Yuriria. Los resultados mostraron que las enzimas con mayor presencia asociada a resistencia fueron α-esterasas, β-esterasas, esterasas y oxidasas.

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Ahmad, M., Denholm, I., Bromilow, R. H. (2006) Delayed cuticular penetration and enhanced metabolism of deltamethrin in pyrethroid‐resistant strains of Helicoverpa armigera from China and Pakistan. Pest Management Science, 62 (9), 805–810. https://doi.org/10.1002/ps.1225 DOI: https://doi.org/10.1002/ps.1225

Bass, C., Field, L. M. (2011) Gene amplification and insecticide resistance. Pest Management Science, 67 (8), 886–890. https://doi.org/10.1002/ps.2189 DOI: https://doi.org/10.1002/ps.2189

Bisset, A. (2002) Uso correcto de insecticidas: control de la resistencia. Revista Cubana de Medicina Tropical, 54, 202–219.

Brogdon, W. G. (1988) Microassay of acetylcholinesterase activity in small portions of single mosquito homogenates. Comparative Biochemistry and Physiology Part C: Comparative Pharmacology, 90 (1), 145–150. https://10.1016/0742-8413(88)90110-7 DOI: https://doi.org/10.1016/0742-8413(88)90110-7

Brogdon, W. G., Barber, A. M. (1990) Microplate assay of glutathione S-transferase activity for resistance detection in single-mosquito triturates. Comparative Biochemistry and Physiology Part B: Comparative Biochemistry, 96 (2), 339–342. https://10.1016/0305-0491(90)90385-7 DOI: https://doi.org/10.1016/0305-0491(90)90385-7

Brogdon, W. G., Dickinson, C. M. (1983) A microassay system for measuring esterase activity and protein concentration in small samples and in high-pressure liquid chromatography eluate fractions. Analytical Biochemistry, 131 (2), 499–503. https://doi.org/10.1016/0003-2697(83)90204-X DOI: https://doi.org/10.1016/0003-2697(83)90204-X

Brogdon, W. G., McAllister, J., Vulule, J. (1997) Heme peroxidase activity measured in single mosquitoes identifies individuals expressing an elevated oxidase for insecticide resistance. Journal of the American Mosquito Control Association, 13 (3), 233–237.

Cao, C. W., Zhang, J., Gao, X. W., Liang, P., Guo, H. L. (2008) Overexpression of carboxylesterase gene associated with organophosphorous insecticide resistance in cotton aphids, Aphis gossypii (Glover). Pesticide Biochemistry and Physiology, 90 (3), 175–180. https://doi.org/10.1016/j.pestbp.2007.11.004 DOI: https://doi.org/10.1016/j.pestbp.2007.11.004

Carranza, J. Á., Quintero, V. P., Muniz, R. B., López, A. M. (2017) Guía 2017 Para El Manejo Del Pulgón. Disponible en: http://www.pulgonamarillogto.com/exteduc/publicaciones/guia_MIPulgonamarillo_2017.pdf (Consultado 01 diciembre 2018).

CESAVEG (2008) Campaña de Manejo Fitosanitario del Sorgo. Disponible en: http://www.cesaveg.org.mx/html/folletos/folletos_08/folleto_sorgo_08.pdf (Consultado 02 octubre 2017).

FAO (2012) Directrices sobre la Prevención y Manejo de la Resistencia de los Plaguicidas. Disponible en: www.fao.org/3/a-bt561s.pdf (Consultado 03 diciembre 2018).

Flores, E. A., Badii, M. H., Ponce, G. G. (2001) Resistencia a insecticidas en insectos vectores de enfermedades con énfasis en mosquitos. Revista Salud Pública y Nutrición, 2 (4) 1–8.

Flores, A. E., Grajales, J. S., Salas, I. F., Garcia, G. P., Becerra, M. H. L., Lozano, S., Beaty, B. (2006) Mechanisms of insecticide resistance in field populations of Aedes aegypti (L.) from Quintana Roo, Southern Mexico. Journal of the American Mosquito Control Association, 22 (4), 672–677. DOI: https://doi.org/10.2987/8756-971X(2006)22[672:MOIRIF]2.0.CO;2

https://doi.org/10.2987/8756-971X(2006)22[672:MOIRIF]2.0.CO;2

Gómez, S., Diaz, J. (1999) Aspectos biológicos de Melanaphis sacchari (Zehnt.) (Homoptera: Aphididae). Centro Agrícola, 26, 13–16.

Hernández, B. O., Arredondo, P. M. A., Cerna, C. E., Ochoa, F. Y. M., Navarro, C. F. E. (2016) Cuantificación de enzimas detoxificativas en pulgón amarillo del sorgo (Melanaphis sacchari) en Saltillo, México. Revista de Ciencias Naturales y Agropecuarias, 3, 5–12.

INTAGRI (2016) Pulgón Amarillo del Sorgo (Melanaphis sacchari) Nueva Plaga del Sorgo Mexicano. Disponible en: https://www.intagri.com/articulos/fitosanidad/pulgon-amarillo-sorgo (Consultado 01 enero 2018).

Laskowska, I., Leszczynski, B., Markowski, J. (1999) Activity of glutathione transferase and reductase in tissues of bird cherry-oat aphid during its host-plant alternation. Experimental and Toxicologic Pathology, 51 (4–5), 357–359. https://doi.org/10.1016/S0940-2993(99)80021-9 DOI: https://doi.org/10.1016/S0940-2993(99)80021-9

Li, X., Schuler, M. A., Berenbaum, M. R. (2007) Molecular mechanisms of metabolic resistance to synthetic and natural xenobiotics. Annual Review of Entomology, 52, 231–253. https://doi.org/10.1146/annurev.ento.51.110104.151104 DOI: https://doi.org/10.1146/annurev.ento.51.110104.151104

López-Ávila, A., Cardona Mejía, C., García González, J., Rendón, F., Hernández, M. D. P. (2001) Reconocimiento e identificación de enemigos naturales de moscas blancas (Homoptera: Aleyrodidae) en Colombia y Ecuador. Revista Colombiana de Entomología, 27, 137–141. DOI: https://doi.org/10.25100/socolen.v27i2.9679

Montella, I. R., Martins, A. J., Viana-Medeiros, P. F., Lima, J. B. P., Braga, I. A., Valle, D. (2007) Insecticide resistance mechanisms of Brazilian Aedes aegypti populations from 2001 to 2004. The American Journal of Tropical Medicine and Hygiene, 77 (3), 467–477. DOI: https://doi.org/10.4269/ajtmh.2007.77.467

Pasteur, N., Raymond, M. (1996) Insecticide resistance genes in mosquitoes: their mutations, migration, and selection in field populations. Journal of Heredity, 87 (6), 444–449. https://doi.org/10.1093/oxfordjournals.jhered.a023035 DOI: https://doi.org/10.1093/oxfordjournals.jhered.a023035

Peña, D. (1987) Estadística, Modelos y métodos. Vol 2. Métodos Lineales y Series Temporales. Alianza Universidad Texto. Madrid, España.

Peña, M. R., Muñoz, V. A. L., Marín, J. A., Bujanos, M. R., Tamayo, M. F., Luevano, B. J., Sánchez, S. L., Ibarra, R. J. (2017) Guía ilustrada para la identificación de los pulgones (Hemiptera: Aphididae) de los cereales en México. Fundación Guanajuato Produce, A.C. 59 pp. Disponible en: https://www.researchgate.net/publication/320291122_Guia_ilustrada_para_la_identificacion_de_los_pulgones_HemipteraAphididae_de_cereales_en_Mexico (Consultado 19 octubre 2017).

Pimentel, M. A. G., Faroni, L. R. D. A., Batista, M. D., Silva, F. H. D. (2008) Resistance of stored-product insects to phosphine. Pesquisa Agropecuária Brasileira, 43, 1671–1676. DOI: https://doi.org/10.1590/S0100-204X2008001200005

R Core Team (2013) R: A language and environment for statistical computing. R Foundation for Statistical Computing, Vienna, Austria.

SDAYR (2016) Guía para el manejo del pulgón amarillo del sorgo. Secretaria de desarrollo agroalimentario y rural. Disponible en: http://sda.guanajuato.gob.mx/contenido/adjuntos/publicaciones/2016/CuadernilloPulgonAmarillo.pdf (Consultado 16 junio 2018).

SENASICA (2014) Pulgón amarillo Melanaphis sacchari (Zehntner). Dirección General de Sanidad Vegetal-Programa Nacional de Vigilancia Epidemiológica Fitosanitaria. México, D.F. Ficha Técnica, no 43, 15 pp. Disponible en: https://www.gob.mx/cms/uploads/attachment/file/159533/FICHA_T_CNICA_PAS.pdf (Consultado 03 enero 2018).

Statistica (2003) User Guides Stat-Soft Inc. Statistica® 6.0. Tulsa, OK, USA.

Wang, J. J., Cheng, W. X., Ding, W., Zhao, Z. M. (2004) The effect of the insecticide dichlorvos on esterase activity extracted from the psocids, Liposcelis bostrychophila and L. entomophila. Journal of Insect Science, 4 (1), 23. https://doi.org/10.1093/jis/4.1.23 DOI: https://doi.org/10.1673/031.004.2301

Wondji, C. S., Irving, H., Morgan, J., Lobo, N. F., Collins, F. H., Hunt, R. H., Ranson, H. (2009) Two duplicated P450 genes are associated with pyrethroid resistance in Anopheles funestus, a major malaria vector. Genome Research, 19 (3), 452–459. https://10.1101/gr.087916.108 DOI: https://doi.org/10.1101/gr.087916.108

Zehntner, L. (1897) Overzicht van de Ziekten van het Suikerriet op Java 2^ e deel. Archief voor de Java-Suikerindustrie, 5, 525–575.

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31-01-2022

Cómo citar

García-Burgos, E., Landeros-Flores, J., Cerna-Chavez, E., Aguirre-Uribe, L., Guevara-Acevedo, L. P., & Rodríguez-Pérez, G. (2022). Perfiles de enzimas asociadas a la resistencia a pesticidas en Melanaphis sacchari (Zehntner) en el sur de Guanajuato. ACTA ZOOLÓGICA MEXICANA (N.S.), 38(1), 1–12. https://doi.org/10.21829/azm.2022.3912441
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